Versi Terjemahan Dari Flow Cytometry Cell Cycle Analysis Using Propidium Iodide DNA Staining

Publish in

Documents

65 views

Please download to get full document.

View again

of 3
All materials on our website are shared by users. If you have any questions about copyright issues, please report us to resolve them. We are always happy to assist you.
Share
Description
Versi terjemahan dari Flow cytometry cell cycle analysis using Propidium iodide DNA staining.docx Cytometry analisis siklus sel aliran menggunakan iodida propidium pewarnaan DNA Pengantar Analisis siklus sel dengan kuantisasi kandungan DNA adalah salah satu aplikasi paling awal aliran cytometry. DNA mamalia, ragi, tanaman atau sel-sel bakteri dapat diwarnai oleh berbagai pewarna mengikat DNA. Premis dengan pewarna ini adalah bahwa mereka stoikiometri yaitu mereka mengikat secara proporsional de
Transcript
  Versi terjemahan dari Flow cytometry cell cycleanalysis using Propidium iodide DNAstaining.docx Cytometry analisis siklus sel aliran menggunakan iodida propidium pewarnaan DNA   Pengantar   Analisis siklus sel dengan kuantisasi kandungan DNA adalah salah satu aplikasi paling awal aliran cytometry.   DNAmamalia, ragi, tanaman atau sel-sel bakteri dapat diwarnai oleh berbagai pewarna mengikat DNA.   Premis dengan pewarnaini adalah bahwa mereka stoikiometri yaitu mereka mengikat secara proporsional dengan jumlah yang hadir DNA dalam sel.   Dengan cara ini sel-sel yang berada dalam fase S akan memiliki DNA lebih dari sel-sel di G1.   Mereka akan mengambil proporsional lebih pewarna dan akan berpendar lebih terang sampai mereka telah dua kali lipat kandungan DNA mereka.   Sel-sel di G2 akan sekitar dua kali seterang sel di G1.   Pewarna DNA-binding termasuk     propidium iodida (PI) (ab14083)   , 7-aminoactinomycin-D (7-AAD), Hoechst 33342 dan33258, TO-PRO-3, 4'6'-diamidino-2-phenylindole (DAPI), dan   DRAQ5 ™ (ab108410)   dan   DRAQ7 ™ (ab109202)   .   Dalamkebanyakan kasus, sel-sel harus diperbaiki atau dipermeabilisasi untuk memungkinkan masuknya pewarna yang dinyatakanaktif dipompa keluar oleh sel-sel hidup.   Untuk fiksasi, fiksasi dalam alkohol atau aldehida biasanya digunakan.   Alkoholadalah fiksatif dehidrasi yang juga permeabilizes.   Hal ini akan memungkinkan akses yang mudah dari pewarna untuk DNAdan memberikan profil yang baik (rendah koefisien variasi, CV).   Kerugiannya adalah bahwa hal itu sering tidak sesuaidengan protein fluorescent dan beberapa penanda permukaan.   Jika ini perlu diperiksa secara bersamaan, penggunaanaldehida (silang) fiksatif, biasanya paraformaldehyde lebih tepat.   Hal ini dapat menyebabkan profil kualitas rendah (CVtinggi) namun akan memungkinkan deteksi simultan fluorochromes lainnya.   Dengan sel tetap, sampel dapat terakumulasi, bernoda dan dianalisis pada akhir percobaan.   Sel Alkohol tetap stabil selama beberapa minggu di 4   o   C.   Sel-sel tetap aldehida yang stabil selama 2 sampai 3 hari.   Sebuah metode alternatif untuk memungkinkan pewarna DNA ke dalam sel adalah untuk permeabilize mereka dengandeterjen.   Hal ini dapat Triton X-100 (0,1%) atau NP40 (0,1%).   Saponin bukan permeabilizing reagen yangdirekomendasikan untuk analisis DNA karena tidak permeabilize membran nuklir dengan baik.   Sel dipermeabilisasi tidak dapat disimpan selama yang tetap dan harus diproses dalam beberapa jam.   Hal ini juga biasanya diperlukan untuk menggabungkan fiksasi (paraformaldehyde) dan permeabilization (Triton X-100)untuk pewarnaan intraseluler.   Metode lain juga tersedia, misalnya penggunaan buffer sitrat (dalam kombinasi dengandeterjen), meskipun ini tidak begitu luas.   Ada juga beberapa pewarna yang akan memasuki sel hidup dan kuantitatif mengikat DNA, ini termasuk Hoechst 33342,   DRAQ5 ™ (ab108410)   dan pewarna DyeCycle.   Metode yang digunakan akan tergantung pada eksperimen dan informasi yang diperlukan.   Dalam protokol ini, PIdigunakan untuk label konten DNA.   Reagen       70% Etanol      Propidium iodida (larutan stok 50   μ   g / ml)      Ribonuklease I (stock 100 mg / ml)   Metode  1.   Panen sel dengan cara yang tepat dan mencuci di PBS.  2.   Perbaiki dalam etanol 70% dingin.   Tambahkan menjatuhkan bijaksana untuk pelet sementaravortexing.   Ini harus memastikan fiksasi semua sel dan meminimalkan menggumpal.  3.   Perbaiki selama 30 menit pada 4   o   C.  4.   Cuci 2 X di PBS.   Berputar pada 850g dalam mesin pemisah dan berhati-hati untuk menghindarihilangnya sel ketika membuang supernatan terutama setelah lepas dari etanol.  5.   Perlakukan sel dengan ribonuklease.   Tambahkan 50 μ l dari 100 μ g / ml kaus kaki dari RNase.   Iniakan memastikan hanya DNA, RNA tidak, ternoda.  6.   Tambahkan 200 μ l PI (dari 50 μ g / ml larutan stok).   Analisis hasil  1.   Mengukur pencar maju (FS) dan samping pencar (SS) untuk mengidentifikasi sel tunggal.  2.   Pengolahan Pulse digunakan untuk mengecualikan doublet sel dari analisis.   Hal ini dapat dicapai baik dengan menggunakan pulsa daerah vs lebar pulsa atau pulsa daerah vs tinggi pulsa tergantung pada jeniscytometer.  3.   PI memiliki emisi maksimum 605 nm sehingga dapat diukur dengan filter bandpass yang cocok.   Hasil yang diharapkan   Sementara menjalankan cytometer tersebut, plot berikut harus ditampilkan:   Depan dan sisi menyebar untuk mengidentifikasi sel-sel   Analisis bentuk pulsa untuk mengidentifikasi gumpalan dan doublet (ini bisa menjadi kawasan pulsa vs lebar pulsa atau pulsa daerah vs tinggi pulsa tergantung pada cytometer)   Maju pencar vs sinyal PI, PI histogram.   Untuk analisis, gerbang pertama pada populasi sel tunggal dengan menggunakan lebar pulsa vs daerah pulsa.   Lalu oleskangerbang ini dengan plot pencar dan gerbang keluar kotoran jelas.   Kombinasikan gerbang dan berlaku untuk histogram petak PI.   Ada dua cara untuk quantitate persentase sel dalam setiap fase siklus sel:  1.   Dengan menggunakan spidol ditetapkan dalam program analisis.    2.   Dengan menggunakan algoritma yang akan mencoba mencocokkan kurva Gaussian untuk setiap fase.   Ini tersedia dengan beberapa perangkat lunak cytometry aliran dan lebih objektif daripada menetapkan penandaoleh mata.   Pemecahan Masalah dan tips  1.   Sel harus dijaga terkonsentrasi mungkin untuk memungkinkan sampel perbedaan tekanan terendahuntuk digunakan.   Ini akan memastikan bahwa aliran sampel inti sesempit mungkin dan memberikan CV yangoptimal.   CV, atau koefisien variasi, adalah ukuran penyebaran data dan didefinisikan sebagai standar deviasi (sd)dibagi dengan rata-rata (m) dinyatakan sebagai persentase (sd / m X 100).  2.   Etanol 70% tidak boleh dilakukan dengan PBS sebagai penyebab protein ini curah hujan pada fiksasi.   Gunakan 70 bagian etanol mutlak untuk 30 bagian air suling.  3.   Analisis DNA parameter tunggal tidak akan menghasilkan informasi kinetik, juga tidak akan mampumembedakan antara sel-sel dalam sangat awal atau akhir fase S dari sel-sel di G1 dan G2 fase masing-masing.   Kita juga tidak bisa membedakan antara G2 dan fase mitosis sel.   Untuk informasi ini, (BrdU) teknik  bromodeoxyuridine harus digunakan atau Anda dapat menggabungkan analisis DNA dengan siklus sel fase-spesifik penanda (misalnya phospho H3 untuk mitosis).  
Related Search

Previous Document

bahan UGD

We Need Your Support
Thank you for visiting our website and your interest in our free products and services. We are nonprofit website to share and download documents. To the running of this website, we need your help to support us.

Thanks to everyone for your continued support.

No, Thanks